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產(chǎn)品中心
Product Center

一步法 SDS 清除試劑盒

一步法 SDS 清除試劑盒

貨號

產(chǎn)品名稱(chēng)


BC101

BcMag?一步法 SDS 清除試劑盒

 


BC102

BcMag?一步法 SDS 清除試劑盒

 


 

產(chǎn)品信息

組成

二氧化硅基質(zhì),表面覆蓋有高密度化學(xué)磁性樹(shù)脂的磁珠

 

穩定性 

短期保存 (<1小時(shí)): pH 3-11; 長(cháng)期保存: pH 4-10

溫度: 4°C -140°C; 可溶于大多數有機溶劑

磁化強度

~40-45 EMU/g

磁化類(lèi)型

超順磁

成分

100 mg / ml溶于d2H2O

結合力

48 μg/每毫克磁珠

儲存

室溫運輸,收到后保存在 4°C .

 

簡(jiǎn)介

十二烷基硫酸鈉是溶解生物材料最常用的洗滌劑之一。然而,過(guò)量的未結合洗滌劑會(huì )干擾許多下游應用,如質(zhì)譜(MS)和氨基酸測序、抗原抗體結合、免疫沉淀分析和ELISA。目前有幾種通用的SDS去除方案,如長(cháng)時(shí)間透析、陰離子交換色譜、離心和丙酮沉淀法等。然而,這些方式要么費時(shí)費力,要么會(huì )丟失樣本,或者不適用于小批量樣本或高通量自動(dòng)化的實(shí)驗要求。我們開(kāi)發(fā)出了一種新型、高效的SDS去除系統來(lái)克服這些限制。 BcMag? One-Minute SDS Removal Magnetic Beads它是用專(zhuān)有化學(xué)磁性樹(shù)脂修飾的二氧化硅磁珠。該樹(shù)脂可以快速有效地從非常小體積的蛋白質(zhì)/多肽或DNA/RNA溶液中去除游離SDS(十二烷基硫酸鈉)。本款磁珠可以在不到10分鐘的時(shí)間內同時(shí)處理96個(gè)樣品。

    本款磁珠可以快速有效地從樣品中去除游離SDS。過(guò)程非常簡(jiǎn)單(圖1)。1.直接將磁珠添加到樣品中。2.用移液器吹吸或渦旋方式捕捉游離SDS洗滌劑。3.將磁珠從蛋白質(zhì)或DNA/RNA溶液中分離,純凈的蛋白質(zhì)或DNA/RNA留在溶液中。與標準滴液柱法和分批法相比,易于使用的磁珠顯著(zhù)改善了純化結果,使蛋白質(zhì)損失降低到最?。?/span><10%)。由于使用的磁珠體積很小,因此,樣品的最終蛋白質(zhì)濃度不會(huì )有顯著(zhù)降低。

 

優(yōu)勢及特點(diǎn)

簡(jiǎn)單的操作過(guò)程:無(wú)液體轉移,僅需一管,一步操作,過(guò)程僅需1分鐘

l 方便快捷

結果真實(shí)可靠可重復性高:對于蛋白質(zhì)(>6 kDa,抑肽酶)或DNA/RNA>25mer雙鏈DNA)樣品回收率>90%。

高效的清除效率:可去除95%的游離清潔劑

l 性?xún)r(jià)比高:無(wú)需離心柱、過(guò)濾器、不用反復的重復移液和使用有機試劑。

l 可用于高通量實(shí)驗:與許多不同的全自動(dòng)核酸提取系統兼容。

Products

Catalog #

BC-101

Catalog #

BC-102

Catalog #

BC-103

Catalog #

BC-104

BcMag? One-minute SDS Removal Magnetic Beads

1 ml

5 ml

25 ml

100 ml

操作協(xié)議

A.材料準備

Item

Source

磁力分離器

**根據樣品體積,用戶(hù)可以選擇以下磁力分離器之一

BcMag? separator-2 適用于兩個(gè)單獨的1.5毫升離心管 (Bioclone, Cat.# MS-01);

 BcMag? separator-6 適用于六個(gè)單獨的1.5毫升離心管 (Bioclone, Cat.# MS-02);

 BcMag? separator-24 適用于24個(gè)單獨的1.5-2.0 ml離心管 (Bioclone, Cat.# MS-03);

 BcMag? separator-50 適用于1個(gè)單獨的50毫升離心管,1個(gè)單獨的15毫升離心管, 以及4個(gè) 1.5毫升 離心管 (Bioclone,Cat.# MS-04

 

BcMag 96磁力分離器

BcMag 96-well Plate Magnetic Separator (side-pull,) 或者 96-well PCR plate  96-well microplate, 或其他兼容的磁力分離器(Blioclone,  Cat#: MS-06)

可調單通道和多通道移液器

 

擺斗離心機

 

如果使用96PCR/管,則需要添加項目

渦懸混合器

**用戶(hù)還可以使用其他型號的渦懸混合器。但是,時(shí)間和速度應進(jìn)行優(yōu)化,并且混合器應滿(mǎn)足:  扭矩  ≥1.5 mm-4 mm, 轉速 ≥ 2000 rpm

Eppendorf? MixMate?

Eppendorf, Cat#:5353000529

Tube Holder PCR 96

Eppendorf, Cat#: 022674005

Tube Holder 1.5/2.0 mL, for 24?×?1.5 mL or 2.0 mL

Eppendorf, Cat#: 022674048

Smart Mixer, Multi Shaker

BenchTop Lab Systems, Cat#:5353000529

 1.5/2.0 mL 離心管

96PCR板或者 8 PCR

PCR /

 ** IMPORTANT! 如果使用其他管或PCR板,確保PCR管或PCR板錐形部分底部的井徑必須≥2.5毫米。

如果使用96孔微孔板需要添加的設備

Fisher Scientific? Microplate Advanced Vortex Mixers

Fisher, Cat#:02-216-101

OHAUS Microplate Vortex Mixers

OHAUS, Cat#:30392160

渦懸混合器

**用戶(hù)還可以使用其他型號的渦懸混合器。但是,時(shí)間和速度應進(jìn)行優(yōu)化,并且混合器應滿(mǎn)足:  扭矩  ≥1.5 mm-4 mm, 轉速 800 rpm

平底透明的非結合型分析微孔板

B.操作過(guò)程

1. 震動(dòng)試劑瓶,使磁珠重新懸浮,直到完全均勻。

重要提示:每2分鐘重新懸浮一次磁珠。分液前必須將磁珠混合。分液時(shí),不要讓磁珠靜置超過(guò)2分鐘。

2. 向含有洗滌劑樣品中加入適量的磁珠。

重要提示:用戶(hù)應根據磁珠的結合能力(48 μg/每毫克磁珠)優(yōu)化游離的洗滌劑和磁珠使用比例。

         **結合能力測定條件:在0.1M磷酸鈉、0.15M NaCl、pH7緩沖液中,將10μl磁珠(100 mg/ml)和100μl含有洗滌劑蛋白質(zhì)樣品(1:400稀釋的人血清)混合。并以2000 rpm的轉速旋轉5分鐘。

3. 將樣品與珠子混,在1-2分鐘通過(guò)移液器緩慢上下移液20-25次,或以2000 rpmPCR

管)或800 rpmElisa板)的轉速旋轉樣品5分鐘。

重要提示:如果使用渦旋混合器,用戶(hù)需要優(yōu)化其工作的速度和時(shí)間。

4. 反應板或樣品管放在磁力分離器30秒或直到溶液澄清。

5. 將上清液轉移到干凈的反應/試管中,同時(shí)將原反應板保留在磁分離上。純化好的

樣品已用于下游應用。

C.問(wèn)題及建議

Problem

Probable cause

Suggestion

蛋白回收率低

渦旋時(shí)間太長(cháng).

· 如果使用其他型號的渦旋振蕩器,則必須優(yōu)化渦旋條件,如速度和時(shí)間。

磁珠用量太多 

   完全重新懸浮磁珠,并減少磁珠的用量。

洗滌劑清除失敗

使用了不合適的試劑管或PCR

確保試劑管或板錐形部分底部的井徑為2.5毫米。

渦旋速度太慢或者渦旋時(shí)間太短

樣品中含有太多的 SDS

· 增加速度或者時(shí)間

· 如果使用其他型號的渦旋振蕩器,則必須優(yōu)化渦旋條件,如速度和時(shí)間。

· 使用更多的磁珠重復操作過(guò)程使

D.參考文獻

1. Puchades M, Westman A, Blennow K, Davidsson P. Removal of sodium dodecyl sulfate from protein samples prior to

matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry. Rapid Commun Mass Spectrom. 1999;13(5):344-9.

2. Ilavenil, S., Al-Dhabi, N.A., Srigopalram, S. et al. Removal of SDS from biological protein digests for proteomic analysis by

mass spectrometry. Proteome Sci 14, 11 (2016).

3. Oscar H. Kapp, Serge N. Vinogradov, Removal of sodium dodecyl sulfate from proteins,Analytical Biochemistry,Volume 91,

Issue 1,1978.

4. Doucette, and A. Crowell, "Precipitation of Detergent-Containing Samples for Top-Down and Bottom-Up Proteomics", in

Proteomics Technologies and Applications. London, United Kingdom: IntechOpen, 2019, Pages 230-235

5. Hou, H., He, H. & Wang, Y. Effects of SDS on the activity and conformation of protein tyrosine phosphatase from thermus

thermophilus HB27. Sci Rep 10, 3195 (2020). 

6. Sun D, Wang N, Li L. Integrated SDS removal and peptide separation by strong-cation exchange liquid chromatography for

SDS-assisted shotgun proteome analysis. J Proteome Res. 2012 Feb 3;11(2):818-28.